基于切向流过滤完成生物偶联物纯化:无需层析工艺即可实现抗体药物偶联物(ADC)精制

作者:Muhammad Sajed,Formulatrix 高级应用科学家

生物偶联技术彻底革新了现代医药领域。不论是可将细胞毒性药物精准递送至肿瘤部位的抗体药物偶联物(ADC),还是寡核苷酸复合物、荧光标记蛋白,这类人工构建分子兼具生物靶向特异性与功能性化学特性。但偶联反应完成、获得合格成品之间,存在一道关键难题:产物纯化精制与制剂置换。

如需深入了解各实验室标准化该工艺流程的方案,可访问我们的生物偶联物纯化应用专题页面。

纯化环节现存痛点

偶联反应结束后,反应体系内除目标产物外,还混杂大量杂质:未反应的小分子药物、过量连接子、有机溶剂以及缓冲盐组分。若不去除杂质,会导致偶联物结构失稳、发生聚集,最终丧失生物活性。

 

生物偶联物质地脆弱,因此纯化环节必须在保证处理效率的同时,优先保全分子完整结构。以 ADC 为例,纯化过程既要维持抗体的完整构型,还要保证所载细胞毒性药物的化学稳定性。药物抗体偶联比(DAR)是衡量 ADC 品质的核心指标,直接决定药效与用药安全性 ¹。任意纯化工艺都必须严格保留偶联反应形成的 DAR 数值。倘若纯化过程剪切力过大、处理周期过长或环境条件剧烈,会造成药物脱落(DAR 比例被破坏)、蛋白变性、分子聚集,永久性损毁 ADC 活性。

传统工艺流程:分段式多步骤操作流程

走进任意一间开展生物偶联实验的实验室,几乎都能见到这套繁琐、高度依赖人工的操作流程:

 

步骤 1:纯化处理

反应结束后,科研人员普遍采用柱层析进行纯化,其中体积排阻层析(SEC)应用最为广泛 ²。但该方法需要反复进行层析柱平衡、淋洗操作;上样后分步收集洗脱组分,经过漫长洗脱才能得到纯化后的偶联产物。该方式虽能提升纯度,但洗脱后的产物浓度偏低,且溶解在过渡缓冲液中。

 

步骤 2:制剂换液

收集的纯化组分需要浓缩,并置换至最终储存缓冲液,实验室阶段大多采用死端过滤(DEF)完成。离心式死端过滤柱是实验室常用方案:加入样本、离心、舍弃透过液、添加新缓冲液,循环往复。样本在离心压力下直接挤压贴合滤膜,极易堵塞膜孔并诱发蛋白聚集;想要判断样本剩余体积,只能反复停下离心操作肉眼观测。
Dead-end filtration diagram showing sample forced directly against membrane under centrifugal pressure, causing pore blocking and aggregation risk.

死端过滤

这套分段式流程需要多次物料转接、人工目测判断体积、反复手动操作,极易造成样本损耗,同时耗费大量人工时长。

单步一体化解决方案:切向流过滤(TFF)

切向流过滤采用完全不同的处理逻辑,将纯化与制剂换液整合为一套连续工艺流程。

 

工作原理:

在 TFF 体系中,样本沿着滤膜表面平行流动,而非垂直压向膜面。跨膜压力驱动小分子杂质穿透膜孔形成透过液,分子量更大的生物偶联物则被截留,并持续循环流动。

 

核心优势:纯化与制剂换液不再是相互独立的两个步骤。在洗除小分子杂质的同时,系统可向密闭循环管路中通入终缓冲液。也就是在一轮渗滤(diafiltration)连续流程内,同步完成纯化精制与缓冲液置换。

Tangential flow filtration diagram showing sample flowing parallel to membrane surface, with small-molecule impurities passing through as permeate while bioconjugate is retained and recirculated

切向流过滤

你只需投入偶联反应粗产物,最终就能获得纯化、浓缩完毕、可直接制剂保存的偶联产物,全程无需手动换液、反复转移样本。

该工艺能为实验流程带来哪些改变?

这套一体化单步工艺具备四大优势:

 

连续不间断:摒弃分段停顿式操作,整套流程从头到尾连续运行。

 

处理条件温和:流体沿膜面持续冲刷,避免死端过滤普遍存在的膜污染与浓差极化问题;体系剪切应力极低,完美保护结构脆弱的偶联分子。

 

处理高效:杂质不断被洗脱去除,目标偶联物稳定循环留存;集成式浓缩环节无需额外步骤即可达到目标终体积。

 

结果可复现:自动化程序锁定运行参数,不会因人工目测体积、操作手法差异带来实验误差。

台式自动化方案:工业化工艺下沉至实验室级别

长久以来,这套一体化 TFF 工艺仅能用于工业化生产场景,配套设备体积庞大、结构复杂,所需样本量远超实验室常规需求。

 

Formulatrix 突破限制,将 TFF 技术微型化,推出 µPulse® 系统及其高通量版本 aµtoPulse®,把一体化单步纯化工艺落地至实验室台式场景:

 

最大化样本回收率

最低仅需 500 μL 粗反应液即可上机;设备死体积为行业极低水平,依托内置回收机制样本回收率最高可达 100%,珍贵样本不会残留在管路死腔中造成损耗。对比实验证实:µPulse 制备 ADC 的最终收率与「SEC 层析 + 死端过滤」传统方案持平,同时完整保留 DAR、单体纯度等关键质量属性 ³。

 

自动化浓缩管控

预设目标浓缩倍数与缓冲置换比例,系统依靠重量传感实时监测运行状态,自动完成后续全部流程。告别人工目测体积的粗放模式,无论哪位操作人员上机,实验结果均可保持一致。

 

真正无人值守运行:

全程无需人工干预。科研人员只需装入粗反应液、设定参数,待流程结束即可取回已经完成纯化、浓缩、置换终缓冲液的成品偶联物。

一套流程搞定全工序,适配各类偶联产物

无论是抗体药物偶联物、寡核苷酸 - 蛋白复合物,或是荧光标记偶联物,均可采用统一流程处理:

  1. 选定适配截留分子量的滤膜
  2. 加入偶联粗反应混合液
  3. 设置目标运行参数
  4. 启动程序
  5. 收集纯化完成、适配制剂保存的偶联产物

无需层析柱、离心过滤柱,无需多次物料转接,从头到尾仅一套自动化流程即可完成。

总结

如今开展生物偶联物中试纯化,不必再采用分段繁琐工艺 —— 多工序衔接不仅效率低下,还会引入误差与实验风险。

实验室级自动化微型 TFF 提供全新一体化方案:单台设备、一套连续流程,即可把粗反应体系加工为合格成品。在保全脆弱偶联分子结构完整性的前提下,实现更高纯度、更高收率与高度可复现的实验结果。

参考文献

1. Casavant, J., Ratnayake, A. S., Puthenveetil, S., & Tumey, L. N. (2020). Detection and removal of small molecule and endotoxin contaminants in ADC preparations. Methods in Molecular Biology, 2078, 291-299.
https://doi.org/10.1007/978-1-4939-9929-3_20

 

2. Matsuda, Y. (2022). Current approaches for the purification of antibody-drug conjugates. Journal of Separation Science, 45, 27-37.
https://doi.org/10.1002/jssc.202100575

 

3. Sajed, M., Khan, Z., Ashraf, M. U., Iftikhar, H., Rahat, T. B., Falak, S., Fozail, S., Gue, Q., Pardo, R., Ramsey, L., & Shahzad, M. S. (2025). Single-step purification and formulation of antibody-drug conjugates using a miniaturized tangential flow filtration system. SLAS Technology, 35, 100351.
https://doi.org/10.1016/j.slast.2025.100351

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FAQs

采用 µPulse-TFF 系统开展生物偶联物纯化处理,最低上样体积是多少?

µPulse 专为科研级实验场景打造,粗反应液初始处理体积最低仅需 500 μL。该设备拥有行业领先的超低滞留体积,样本回收率最高可达 100%。对于抗体药物偶联物(ADC)、寡核苷酸偶联物这类珍贵样本而言,每微升样本都极具价值,超高回收率是至关重要的优势。

单次生物偶联物纯化流程中,TFF 能否同步完成纯化与缓冲液置换两道工序?
纯化阶段,TFF 如何避免 ADC 这类脆弱生物偶联物发生降解?
用于生物偶联纯化时,µPulse 与 aµtoPulse 两款系统有什么区别?
µPulse 如何保障多次生物偶联纯化实验结果具备良好重复性?